Klinische Kooperationseinheit Neuroonkonlogie

Mit der bahnbrechenden Entdeckung multizellulärer Glioblastom-Netzwerke ergab sich gleichzeitig ein neuartiger Ansatz um das Wachstum und die Resistenz von Hirntumoren zu erklären. Mit dem Ziel, die molekularen Grundlagen dieser Netzwerke zu entschlüsseln, haben wir eine transkriptomische Signatur für verbundene Glioblastomzellen durch Einzelzell- und Bulk-RNA-Sequenzierung von In-vitro- und In-vivo-Modellen sowie Patientengewebe aus klinischen Studien etabliert. Chitinase-3-like 1 (CHI3L1), einen molekularen Marker mit funktioneller Relevanz für Tumorzellnetzwerke und potenzieller therapeutischer Anwendbarkeit, beim Glioblastom identifiziert und seine Bedeutung validiert. Diese Entdeckungen haben den Weg für weitere Folgeprojekte zum genauen Wirkmechanismus von CHI3L1 und zur Relevanz anderer mutmaßlicher Tumornetzwerk-relevanter Gene geebnet.

Dieser Forschungszweig zielt darauf ab, die molekularen Mechanismen mehrerer zielgerichteter Therapien wie z.B. Temsirolimus, einem mTOR-Inhibitor, und Atezolizumab, einem Anti-PD-L1-Antikörper, besser zu verstehen. Darüber hinaus erforschen wir zelluläre Signaltransduktionswege, die an der erworbenen Resistenz beteiligt sind, wie z.B. der TP53-Signalweg im Kontext einer Chemotherapie. Es besteht ein hohes Interesse daran, die Wechselwirkung zwischen Bestrahlung und den molekular zielgerichteten Behandlungen zu verstehen, welche im Rahmen der NCT Neuro Master Match (N2M2) Umbrella-Studie und weiterer, von der klinischen Sektion der Neuroonkologie koordinieren, randomisierten Studien verabreicht werden. Hierzu wird das Patientengewebe mit zahlreichen Omics-Technologien zunächst analysiert und hervorgehende Marker validiert.

Das Flüssigbiopsie-Programm für maligne Hirntumoren umfasst einen integrativen Multiomik-Ansatz in dem Patientenliquor mittels Zytologie, Proteomik und Sequenzierung von zirkulierender Tumor-DNA analysiert wird. Die Proteomik ermöglicht die Identifizierung von Liquor-Biomarkern, die für Glioblastome im Vergleich zu anderen malignen Gehirnerkrankungen spezifisch sind, sowie die Gruppierung von Glioblastom-Patienten in prognostisch unterschiedliche Cluster. Die ctDNA-Sequenzierungsplattform, die ein Panel von über 200 Hirntumor-relevanten Genen umfasst, erlaubt Glioblastom-spefzifische Mutations- und Kopienzahlprofile zu erkennen, wodurch auf Gewebebiopsien zur Diagnose und Tumorentwicklung verzichtet werden kann.

Molekulare Fingerabdrücke und phänotypische Merkmale von Glioblastom-Stammzellen.

Antigene die vor und nach einer Glioblastom-Therapie exklusiv oder deutlich hochreguliert sind im Vergleich zu gesunden Geweben, werden sowohl mit Immun-Checkpoint-Inhibitoren, Tumorimpfstoffen als auch CAR-T-Zell adressiert. Wir untersuchen insbesondere Interventionstherapien für PD-L1, IDH1 R132H sowie weitere, nach einer Leitlinientherapie hochreguliere Targets.

In bereits durchgeführten Studien haben wir mittels diverser genetischer Analysen (unter anderem Whole Exome/Genome Sequencing, 850k-Analyse) von PCNSL-Proben molekulare Signaturen der ZNS-Lymphomgenese entschlüsselt. Jedoch ist die funktionelle Bedeutung von vielen der neu entdeckten genetischen Veränderungen noch unzureichend verstanden. Die Befunde werden daher in Lymphom-Zelllinien in vitro und in vivo unter Verwendung von Xenograft-Modellen modelliert und die phänotypischen und molekularen Folgen dieser genetischen Veränderungen untersucht. In vitro-Medikamentenscreenings und CAR-T-Zell-Engineering ermöglichen weiterhin die Applikabilität neuartiger zielgerichteter Therapien gegen diese Veränderungen. Nach einer erfolgreichen Evaluierung im präklinischen Mausmodell sollen die Erkenntnisse möglichst früh in klinische Studien überführt werden.